分组：每一次实验分为不染组、单染AnnexinV组、单染PI组以及PI和AnnexinV双染组，处理组按从低到高进行双染；
染色：用PBS把4×bindingbuffer稀释到1×缓冲液，吸净离心管残余的PBS后，每管加入100μL的1×的bindingbuffer，用移液枪吹打细胞使细胞充分重悬，避光条件下加入染料。不染组不加，正宗流式测细胞因子, 流式检测设备报价相关，单染组加AnnexinV或PI5μL，查流式测细胞因子,电火花检测仪相关，AnnexinV和PI双染组加入AnnexinV和PI各5μL，并用移液枪轻轻混匀；
上机检测：室温避光孵育15分钟后，加入1×的bindingbuffer300μL并混匀后避光下将细胞悬液转移到5mL的流式管中，1h内在流式细胞仪上机检测。
三、数据分析
AnnexinV-FITC/PI凋亡检测试剂盒是用FITC标记的AnnexinV作为探针，FITC最大激发波长为488nm，最大发射波长525nm，FITC的绿色荧光在FL1通道检测；PI-DNA复合物的最大激发波长为535nm，最大发射波长为615nm，PI的红色荧光在FL2或FL3通道检测。
举例：如常用于研究药物或者基因等对细胞凋亡的影响。通过比较Control组和药物组，发现化合物可以诱导前列腺癌细胞系PC-3M的细胞凋亡，处理组（20μM）的晚期凋亡细胞比例与Control组（0μM）相比，从1.79%上升到11.39%。进而还可根据每个象限的数据计算出活细胞、凋亡细胞和坏死细胞百分率。
四、常见问题解答
1.如何避免出现假阳性结果？
细胞接种不易过密：接种对数生长期的细胞时密度不要＞1*106，以免细胞培养过程中自身引起凋亡，而非外界处理因素；
避免消化过度：因消化过度可能会造成PS外翻，得到假阳性的结果。因此消化时最好用低浓度胰酶消化，轻柔吹打贴壁细胞2-3次，尽量把胰酶造成损伤可以控制在5%以内，加上对照组的情况下对实验结果不会造成明显影响；
首先，明确一下细胞凋亡和坏死的区别
细胞凋亡(apoptosis)是一件主动性细胞死亡事件，它涉及一系列基因的激活、表达以及调控，是细胞为更好地适应环境而主动争取的一种死亡过程。具体表现为：出芽形成凋亡小体、核小体间DNA的切割，凋亡小体被吞噬和消化等几个连续过程等
细胞坏死（necrosis）则是一件被动的过程，是细胞受到强烈理化或生物因素作用引起细胞无序变化的死亡过程，即病理条件下，长沙科文生物科技有限公司,科文生物科技,自体损伤的一种现象。具体表现为：细胞胀大，胞膜破裂，细胞内容物外溢，核变化较慢，DNA降解不充分，查流式测细胞因子, 流式检测设备价格相关，会引起局部严重的炎症反应
一、流式检测细胞凋亡的原理
AnnexinV和PI双染法是流式检测细胞凋亡的经典方法，它是基于凋亡的早期细胞膜上的磷脂酰丝氨酸（phosphotidylserine,PS）从细胞膜的内侧翻转到细胞膜的表面这一原理来实现的
该方法简便、快速、准确区分活细胞、凋亡细胞和坏死细胞，具体原理如下：
AnnexinⅤ（膜联蛋白V）是一种分子量为35-36kDa的Ca2+依赖性磷脂结合蛋白，能与PS高亲和力结合，将AnnexinV进行荧光素FITC标记，利用流式细胞仪或荧光显微镜可检测细胞凋亡的发生。
碘化丙啶（Propidium,PI）是一种可与DNA结合的染料，它不能透过正常细胞或早期凋亡细胞的完整的细胞膜，但在凋亡中晚期的细胞和死细胞，PI能够透过细胞膜而使细胞核红染。
因此，将AnnexinV与PI联合使用时，便可用来鉴别活细胞，凋亡细胞及死亡细胞。
二、实验操作步骤
收集细胞：取适量的对数生长期细胞接种于6孔板中，在相应的条件下（如药物）处理相应时间后，收集细胞，注意要合并上清和消化下来的细胞（注：悬浮细胞直接离心即可）；
清洗细胞：用预冷的PBS洗2遍细胞；
操作尽量轻柔：收集细胞时力度过大很可能造成细胞膜损伤，导致细胞膜的磷脂层暴露，从而结合AnnexinV，导致假阳性，因此处理贴壁细胞时要小心操作，尽量避免人为的损伤。
2.为什么必须收集细胞上清？
因为凋亡的细胞可能会脱壁，悬浮于培养基，所以必须收集上清再离心取沉淀，合并胰酶消化下来的细胞，不然检测出来的凋亡比例可能会减少。
3.为什么在染色后1h内就要上机检测？
由于细胞凋亡是一个快速的过程，建议样品在染色后1小时之内进行分析；PI受时间的影响很大，因标记了PI后会加大细胞毒性，特别是检测早期凋亡时，如果时间延长除了会导致在流式细胞仪上的细胞分群差距加大外，误差会明显加大，所以建议在一个小时内检测。
4.其他注意事项
消化是关键步骤，注意消化时间和操作力度，过短的话细胞需要用力吹打才能脱落，容易造成膜损伤，过长又易造成假阳性；
AnnexinV-FITC和PI是光敏物质，在操作时请注意避光；
避免洗涤时细胞损失过多，可考虑在吸液时用大的Tip头套上小的Tip头吸液；
上机检测时，必须重悬成细胞悬液后再检测，否则容易堵仪器管道；如果细胞过多或聚团严重，可先用300目（孔径40~50微米）尼龙网过滤，然后再上机检测；
注意：FITC为绿色荧光，此检测方法不适用于已带绿色荧光标签的细胞；
如果样品来源于血液，请务必除去血液中的血小板。因为血小板含有PS，能与AnnexinV结合，从而干扰实验结果。
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