5ml/5x106个细胞、6cm培养皿、75cm2培养瓶)!用预冷的细胞刮子将细胞从培养皿或培养瓶上刮下,把悬液转到5EP管中,4℃,缓慢晃动15min(EP管插冰上,置水平摇床上)。4℃,14000g离心15min,立即将上清转移到一个新的离心管中!准备ProteinAagarose,用PBS洗两遍珠子,然后用PBS配制成50%浓度,建议减掉枪尖部分,避免在涉及琼脂糖珠的操作中破坏琼脂糖珠!每1ml总蛋白中加入100ulProteinA琼脂糖珠(50%),4℃摇晃10min(EP管插冰上,置水平摇床上),以去除非特异性杂蛋白,降低背景。
目前多用精制的proreinA预先结合固化在argarose的beads上,使之与含有抗原的溶液及抗体反应后,beads上的proreinA就能吸附抗原达到精制的目的!这种方法常用于测定两种目标蛋白质是否在体内结合;也可用于确定一种特定蛋白质的新的作用搭档.试剂准备预冷PBS,RIPABuffer,细胞刮子(用保鲜膜包好后,埋冰下),离心机!用预冷的PBS洗涤细胞两次,一次吸干PBS!加入预冷的RIPABuffer(1ml/107个细胞、10cm培养皿或150cm2培养瓶,0.
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将收集的肽在ABI477A或494A机器上进行自动Edman降解测序!注意事项:细胞裂解采用温和的裂解条件,不能破坏细胞内存在的所有蛋白质——蛋白质相互作用,多采用非离子变性剂(NP40或TritonX-100)。每种细胞的裂解条件是不一样的,通过经验确定!不能用高浓度的变性剂(0.2%SDS),细胞裂解液中要加各种酶抑制剂,如商品化的!使用明确的抗体,可以将几种抗体共同使用!使用对照抗体:单克隆抗体:正常小鼠的IgG或另一类单抗兔多克隆抗体:正常兔IgG确保共沉淀的蛋白是由所加入的抗体沉淀得到的,而并非外源非特异蛋白,单克隆抗体的使用有助于避免污染的发生。
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实验原理:免疫共沉淀(Co-immunoprecipitation,Co-IP)以抗体和抗原之间的专一性作用为基础,用于研究两个蛋白质在活体细胞内生理性相互作用的经典的方法.当活体细胞在非变性条件下被裂解时,完整细胞内存在的许多蛋白质-蛋白质间的相互作用被保留下来.如果用蛋白质X的抗体免疫沉淀X,与X在细胞内结合的蛋白质Y可以与蛋白质X一起以复合物的形式被沉淀下来,然后经Westernblot或质谱的方法对蛋白质Y进行检测或鉴定!
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实验目的:确定两种目标蛋白质是否在活体细胞体内相互作用,也可用于确定一种特定蛋白质的新的相互作用搭档。操作步骤:适用范围依据抗体类型(蛋白质X自身特异性抗体、蛋白质X融合商品化标签抗体)!本方法试例举:蛋白质X融合FLAG标签,将该载体转基因转入水稻获得稳定转基因植株,然后用FLAG标签抗体利用Co-IP方法沉淀与蛋白质X互作的蛋白质复合物,用Westernblot方法检测蛋白质Y是否一起被沉淀下来,以确定在水稻体内蛋白质X和蛋白质Y是否真正相互作用.