于4°C,12,000rpm离心15s,小心将上清吸取弃之!加入约40µl2倍上样缓冲液,100°C变性5min,稍离心,取适量体积进行Westernblot实验,分别用商品化FLAG标签抗体和蛋白质Y抗体进行检测!通过免疫共沉淀确定结合蛋白1.用磷酸盐缓冲液洗30块10cm培养板上的适宜细胞!刮去每块板上的细胞到1ml冰冷的EBC裂解缓冲液中;2.将每毫升细胞悬液转移到微量离心管中,在微量离心机上4℃离心15;3.收集上清(约30ml)并加入30ug的适当抗体,4℃摇动免疫沉淀物1h;4.加入0。
加入20倍体积预冷的TBS缓冲液以平衡Gel,于4°C,4,000rpm离心1min,小心将上清吸取弃之;重复3次!于4°C,12,000rpm离心15s,小心将上清吸取弃之。取蛋白质加入到已平衡化的Anti-FLAGM2AffinityGel中,于4°C孵育。洗脱Gel.于4°C,4,000rpm离心1min,小心将上清吸取弃之!加入1,500µl预冷的IP缓冲液洗脱Gel,于4°C孵育5min,4,000rpm离心1min,小心将上清吸取弃之;如此重复3次.
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取水稻叶片5g,经液氮研磨后,加入3倍体积蛋白IP缓冲液,在4°C混匀30min!于4°C,12,000g离心30min,将上清转移至一个预冷的新的离心管中.用0.22µm滤膜过滤上清,取过滤的50µl上清作为Input,用于蛋白质X的检测!Anti-FLAGM2AffinityGel预处理!取出50µl预混匀的Anti-FLAGM2AffinityGel转移至一预冷的离心管中!于4°C,4,000rpm离心1min,小心将上清吸取弃之。
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实验原理:免疫共沉淀(Co-immunoprecipitation,Co-IP)以抗体和抗原之间的专一性作用为基础,用于研究两个蛋白质在活体细胞内生理性相互作用的经典的方法.当活体细胞在非变性条件下被裂解时,完整细胞内存在的许多蛋白质-蛋白质间的相互作用被保留下来!如果用蛋白质X的抗体免疫沉淀X,与X在细胞内结合的蛋白质Y可以与蛋白质X一起以复合物的形式被沉淀下来,然后经Westernblot或质谱的方法对蛋白质Y进行检测或鉴定!
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4℃,14000g离心15min,将上清转移到一个新的离心管中,去除ProteinA珠子。9.(Bradford法)做蛋白标准曲线,测定蛋白浓度,测前将总蛋白至少稀释1:10倍以上,以减少细胞裂解液中去垢剂的影响(定量,分装后,可以在-20℃保存一个月)。10.用PBS将总蛋白稀释到约1ug/ul,以降低裂解液中去垢剂的浓度,如果兴趣蛋白在细胞中含量较低,则总蛋白浓度应该稍高(如10ug/ul)!1加入一定体积的兔抗到500ul总蛋白中,抗体的稀释比例因兴趣蛋白在不同细胞系中的多少而异!
如果您想了解Co-IP更多信息,请致电 :17791388172,或者您直接到我们公司总部一起交流研讨,地址:陕西省西安市雁塔区长安南路86号澳城大厦,我们期待您的致电或来访。
9ml的蛋白质A-Sepharose悬液,4℃摇动免疫沉淀物30min;5.用含900mmol/LNaCl的NETN洗蛋白A-Sepharose混合物,再重复洗5次.用NETN洗一次;6.吸出混合物的液体部分!加入800ul的1xSDS胶加样缓冲液到球珠中,煮沸4min;7.将样品加入到大孔的不连续SDS-PAGE梯度胶中,在10mA的恒定电流下电泳过夜;8.通过考马斯亮蓝染色观察蛋白质泳带;9.从胶上切下目标带,将其放到微量离心管中,用1ml50%乙腈洗两次,每次3min;10.用胰蛋白酶消化胶中的蛋白质,再将肽电洗脱;11.通过窄孔高效液相色谱分离肽。