理想细胞转染方法，应该具有转染效率高、细胞毒性小等优点.病毒介导的转染技术，是目前转染效率较高的方法，同时具有细胞毒性很低的优势！但是，病毒转染方法的准备程序复杂，常常对细胞类型有很强的选择性，在一般实验室中很难普及!其它物理和化学介导的转染方法，则各有其特点！无论采用哪种转染技术，要获得较优的转染结果，可能都需要对转染条件进行优化！影响转染效率的因素很多，从细胞类型、细胞培养条件和细胞生长状态，到转染方法的操作细节，都需要考虑!
核酸复合物制备：将核酸与转染试剂按照1:1关系直接混合，用移液器吹吸10-15次混匀，室温静止10-15分钟。在细胞培养基中加入核酸复合物：根据参考用量在细胞中加入核酸复合物，并轻轻混匀；细胞培养基里面可以含有血清.细胞换液：转染24小时后对细胞进行正常换液，悬浮细胞转染过程中不用换液.分析结果：质粒DNA转染48-72小时后荧光检测转染效率，48-96小时检测mRNA或蛋白表达！若进行稳定表达细胞株的筛选，则在转染后24-48小时左右加入适量的药物进行筛选.
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Thermo品牌RNAiMAX采用阳离子脂质体，需要更换培养基；特点是专门用来转RNA，对于细胞系的转染效率一般，对干细胞和神经原代细胞转染效果差!Promega品牌FuGENE6采用脂质混合体、特定缓冲液，需要更换培养基；特点是本质还是脂质体；只能转DNA；含有微量动物源成分，适用细胞种类因此受限；转染前后需要更换培养基；亲塑性，转染效率会因使用PE管（塑料管）而大打折扣！Roche品牌FuGENEHD采用脂质混合体、特定缓冲液，需要更换培养基；特点是本质还是脂质体；只能转DNA；亲塑性，转染效率会因使用PE管（塑料管）而大打折扣.
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